蛋白质印迹法实验步骤
对于蛋白质印迹法,将膜与使用 5% w/v BSA 或脱脂奶粉的 1X TBS、0.1% Tween20稀释的一抗在 4°C 下孵育过夜,同时轻轻振摇。
A. 溶液和试剂
20 X 磷酸盐缓冲液 (PBS):为了制备 1 L 1 X PBS:添加 50 ml 20 X PBS 至 950 ml dH2O,然后将其混匀。
10X Tris 盐缓冲液 (TBS): 要制备 1 L 1X TBS:向 900 ml dH2O 中添加 100 ml 10X,然后混匀。
1X SDS 样品缓冲液:Blue Loading Pack 或Red Loading Pack ;通过添加 1/10 体积的 30 X DTT 至 1 体积的 3 X SDS 上样缓冲液,制备新鲜的 3 X 还原上样缓冲液。用 dH2O 将其稀释至 1X。
10X Tris-Glycine SDS 电泳缓冲液:要制备 1 L 1X 电泳缓冲液:向 900 ml dH2O 中添加 100 ml 10X 电泳缓冲液,然后混匀。
10X Tris-Glycine 转移缓冲液:要制备 1 L 1X 转移缓冲液:向 200 ml 甲醇 + 700 ml dH2O 中添加 100 ml 10X 转移缓冲液,然后混匀。
10X Tris Buffered Saline with Tween® 20 (TBST):要制备 1 L 1X TBST:向 900 ml dH2O 中添加 100 ml 10X TBST,然后混匀。
脱脂奶粉
封闭缓冲液:含 5% w/v 脱脂奶粉的 1X TBST;要制备 150 ml,向 150 ml 1X TBST 中添加 7.5 g 脱脂奶粉并充分混匀。
洗涤缓冲液:1X TBST。
牛血清白蛋白 (BSA)
一抗稀释缓冲液:如一抗数据表上所示,含 5% BSA 或 5% 脱脂奶粉的 1X TBST;要制备 20 ml,向 20 ml 1X TBST 中添加 1.0 g BSA 或脱脂奶粉并充分混匀。
生物素化的蛋白分子量标准品检测包:
预染蛋白质标准品,宽范围 (11-190 kDa)
印迹膜和纸:本实验步骤已针对硝酸纤维素膜进行了优化。通常推荐 0.2 µm 孔径。
HRP 偶联二抗:抗兔 , 抗小鼠
检测试剂:LumiGLO®化学发光试剂和过氧化物 。
B. 蛋白质印迹
添加含有调节因子的新鲜培养基,使其对细胞进行处理一段时间。
从培养物中吸出培养基;用 1X PBS 洗涤细胞;吸出。
加入 1X SDS 样品缓冲液裂解细胞(6 孔板每孔加 100 µl 或直径为 10 cm 盘中加 500 µl)。立即从板上刮下细胞并将提取物转移至微量离心管。置于冰上。
超声处理 10–15 秒以完成细胞裂解并剪切 DNA(以降低样品粘度)。
取 20 µl 样品,在 95–100°C 下加热 5 分钟;放在冰上冷却。
微量离心机内离心 5 分钟。
取 20 µl 上样到 SDS-PAGE 凝胶 (10 cm x 10 cm) 上。
注:建议将预染蛋白分子量标准品(5 µl/泳道)上样以验证电转移和将生物素化的蛋白质分子量标准品 (0 µl/泳道)上样以确定分子量。
电转至硝酸纤维素膜 。
C. 膜封闭和抗体孵育
I. 膜封闭
(可选)转移之后,在室温下用 25 ml TBS 将硝酸纤维素膜洗涤 5 分钟。
将膜置于 25 ml 封闭缓冲液中,在室温下孵育 1 小时。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
II.一抗孵育
根据所使用的一抗,继续下述其中一项的具体步骤。
对于无偶联的一抗
将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释度和稀释液)置于 10 ml 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
按一抗来源选取合适的 HRP 偶联的二抗,同时加入anti-biotin, HRP-linked Antibody以检测生物素化的蛋白质标准品。置于 10 ml 封闭缓冲液中孵育 1 小时并不时轻轻搅动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
继续进行检测(D 部分)。
对于偶联有HRP 的一抗
将膜和一抗(按照产品数据表中建议的适当稀释度)置于 10 ml 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
与检测生物素酰化蛋白质标准品的 Anti-biotin, HRP-linked Antibody 在室温下于 10 ml 封闭缓冲液中孵育 1 小时并不时轻轻搅动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
继续进行检测(D 部分)。
对于生物素化的一抗
将膜和一抗(按照产品数据表中建议的适当稀释度)置于 10 ml 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
将膜与 Streptavidin-HRP 在室温下于 10 ml 封闭缓冲液中孵育 1 小时并不时轻轻晃动。
用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
继续进行检测(D 部分)。
请勿加入用于检测生物素化蛋白标准品的 Anti-biotin, HRP-linked Antibody。没有必要。Streptavidin-HRP 也将会使生物素化标准品可视化。
D. 蛋白质检测
将膜与 10 ml LumiGLO®(0.5 ml 20X LumiGLO® 、0.5 ml 20X 过氧化物和 9.0 ml 净化水)或 10 ml SignalFire™ (5 ml 试剂 A,5 ml 试剂 B)在室温下孵育1 分钟并不时轻轻搅动。
将膜上多余的显影液沥干(勿令其干燥),包裹在塑料膜中,然后用 X 射线胶片曝光。从刚开始的 10 秒曝光结果中可以看出适当的曝光时间。
注:由于检测反应的动力学特征,在孵育后信号立即变得最强,但在随后的 2 小时内会减弱。